| 产品简介 | 大鼠脂肪间充质干细胞成骨诱导分化培养基专门为大鼠脂肪间充质干细胞成骨诱导分化而开发，针对大鼠脂肪间充质干细胞的特性优化分化试剂的配方，可增加大鼠脂肪间充质干细胞的成骨分化效果。本产品含血清成分，仅用于科研或进一步研究使用，不用于诊断和治疗。 |
|---|---|
| 产品形态 | 液体 |
| 细菌检测 | 阴性 |
| 真菌检测 | 阴性 |
| 支原体检测 | 阴性 |
| 内毒素含量 | < 3 EU/mL |
| 运输条件 | 冰袋运输或低温 |
| 储存条件 | 按标签所示温度保存，避光储存 |
| 有效期 | 12个月 |
| 注意事项 | 1. 本产品仅用于科研或进一步研究使用，不用于诊断和治疗。2. 由于成骨诱导分化实验历时较长，请在配制及使用本产品过程中严格注意无菌操作。3. 成骨诱导实验过程中，很难通过镜下观察/白光照片判断是否已经完成诱导，而孔板一经染色又无法继续诱导。因此建议“实验伊始，在另外的孔板上多做（1-3）份平行实验，或仅将‘正常诱导组’在另外的孔板上多做（1-3）份，以便诱导后期用茜素红染色来判断正式实验的诱导进度”。4. 大鼠脂肪间充质干细胞成骨分化添加物的颜色为白色至黄色，不影响正常使用。5. 大鼠脂肪间充质干细胞成骨分化添加物融化后有轻微白色沉淀，该成分为L-谷氨酰胺，可将成骨分化 添加物直接添加到基础培养基中，不影响正常使用。6. 血清离心：血清中可能会存在白色絮状沉淀物，这通常是胆固醇、脂肪酸酯以及一些蛋白质析出导致，属于正常现象，该现象不影响细胞的培养和诱导分化。若您欲去除这些絮状沉淀物，可以将血清分装至无菌离心管内，以400-600 g离心5 min，取上清液使用。但是我们不建议您以过滤的方法去除这些絮状沉淀物，一方面它可能会阻塞您的过滤膜；另一方面，过滤血清这种行为可能会导致血清中部分营养成分的流失。 |
请在以下方框中输入您的动物实验信息后点击计算，可以得到母液配置方法和体内配方的制备方法：
比如您的给药剂量是10 mg/kg，每只动物体重20 g，给药体积100 μL， 一共给药动物10只，您使用的配方为 10% DMSO + 40% PEG300 + 5% Tween 80 + 45% Saline / PBS / ddH2O， 那么您的工作液浓度为2 mg/mL。
母液配置方法：2 mg 药物溶于 100 μL DMSO （ 母液浓度为 20 mg/mL ）, 如您需要配置的浓度超过该产品的溶解度，请先与我们联系。
体内配方的制备方法： 取 100 μL DMSO 母液， 添加 400 μL PEG300 混匀澄清， 再加 50 μL Tween 80, 混匀澄清, 再加 450 μL Saline / PBS / ddH2O 混匀澄清
以上为“体内实验配液计算器”的使用方法举例，并不是具体某个化合物的推荐配制方式，请根据您的实验动物和给药方式选择适当的溶解方案。
方案所需的各类助溶剂如： DMSO， PEG300， PEG400， Tween 80， SBE-β-CD， 玉米油等， 均可在诺渊网站点击购买。
计算结果:
工作液浓度： mg/ml；
DMSO母液配制方法： mg 药物溶于 μL DMSO溶液（母液浓度 mg/mL，
体内配方配制方法：取 μL DMSO母液，加入 μL PEG300，混匀澄清后加入μL Tween 80，混匀澄清后加入 μL Saline/PBS/ddH2O，混匀澄清。
1. 首先保证母液是澄清的；
2.
一定要按照顺序依次将溶剂加入，进行下一步操作之前必须保证上一步操作得到的是澄清的溶液，可采用涡旋、超声或水浴加热等物理方法助溶。
